Fulvius carayoni, Pluot-Sigwalt & Chérot, 2013

Pluot-Sigwalt, Dominique & Chérot, FrÉdÉric, 2013, DonnÉes biologiques et anatomiques, rÉgime alimentaire et taxonomie d’un nouveau Fulvius afrotropical (Insecta, Heteroptera, Miridae, Cylapinae, Fulviini), Zoosystema 35 (1), pp. 45-68 : 49-54

Fulvius carayoni n. sp.

( Figs 1-11 )

MATÉRIEL TYPE. — Holotype ♂, Cameroun, Région du Centre, Yaoundé, N’Kolbisson (environ 03°52’N, 11°31’E): Holotype / Holotype Fulvius carayoni Pluot- Sigwalt & Chérot / Cameroun, N’Kolbisson, v.1982,

J. Carayon rec. / élevage/Muséum Paris (FC n° 5469) (MNHN EH 18203).

PARATYPES. — Cameroun. Région de l’Ouest, Bayangam (environ 05°18’N, 10°27’E), 5 ♂♂, 1 ♀?, élevage / Cameroun, Mont-Kala, iv.1982, J. Carayon rec./Coll. Mus.Tervuren/ Fulvius phaiocerus Sigwalt & Schmitz , det. J. Gorczyca (FC n° 5447-5452) (MRAC). — 11 ♂♂, 2 ♀♀: Cameroun, Mont-Kala, iv.1982, J. Carayon rec./ élevage/Muséum Paris (FC n° 5456-5466, 5470, 5481) (MNHN EH 18204-18216). — Région du Centre, Yaoundé, N’Kolbisson (environ 03°52’N, 11°31’E), 6 ♂♂, 4 ♀♀, Cameroun, N’Kolbisson, v.1982, J. Carayon rec./élevage/Muséum Paris (FC n° 5455, 5467, 5468, 5471-5479) (MNHN EH 18217-18226).

Côte d’Ivoire. Région des Lagunes, Adiopodoumé (environ 05°20’N, 04°084 E), 1 ♀, Côte d’Ivoire, Adiopodoumé, IX-XII.1947, Coll. Ch. Primot / Muséum Paris, 1950, coll. Ch. et J. Primot / sur [illisible] / Paratype / Fulvius femelle sp. n. phaiocerus G. Schmitz det. 1970 (FC n°5480) ( MNHN EH 18227).

Ghana. Région de Brong Ahafo,Tain (08°02’N, 02°22’O), 1 ♂, subcortical / Tai(o)n,Trib.F. R., Ghana, 11.XII.1965 / Coll. Mus. Tervuren / Fulvius phaiocerus Sigwalt & Schmitz , det. J. Gorczyca (FC n° 5438) ( MRAC). — Région occidentale, Enchi (05°49’N, 02°49’O), 1 ♂, Enchi, NR [ou WR ou MIR?], Ghana, 02.II.[19]66, Leston / D. Leston Coll., B. M. 1976-509 / Coll. Mus. Tervuren / Fulvius phaiocerus Sigwalt & Schmitz , det. J. Gorczyca (FC n° 5444) ( MRAC). — Région Orientale, Tafo (environ 06°12’N, 00°22’O): 1 ♀: Tafo, Ghana, 20.VII.[19]65 / Coll. Mus. Tervuren / Fulvius phaiocerus Sigwalt & Schmitz , det. J. Gorczyca (FC n° 5434) ( MRAC). — 1 ♂, 2 ♀♀: Tafo, Ghana, 02.X.[19]65 / Coll. Mus. Tervuren / Fulvius phaiocerus Sigwalt & Schmitz , det. J. Gorczyca (FC n° 5440, 5435 et 5439) ( MRAC). — 1 ♂, 1 ♀: subcortical / Tafo, Ghana, 06.II.[19]66 / Coll. Mus. Tervuren / Fulvius phaiocerus Sigwalt & Schmitz , det. J. Gorczyca (FC n° 5441-5442) [le mâle très endommagé, la tête perdue] ( MRAC). — 1 ♂: Tafo, Ghana, 02.V.(19)66 / U.V. trap / Coll. Mus. Tervuren / Fulvius phaiocerus Sigwalt & Schmitz , det. J. Gorczyca (FC n° 5437) ( MRAC). — 1 ♂: Tafo, Ghana, 06.I.[19]67 / under bark of fallen tree / Coll. Mus. Tervuren / Fulvius phaiocerus Sigwalt & Schmitz , det. J. Gorczyca (FC n° 5443) ( MRAC).

Guinée. Région de Nzérékoré, Mont Nimba (environ 07°37’N, 08°24’O): 1 ♀: IFAN–1946, Mont Nimba N.E., 500-700 m, A. Villiers / Forêt prim[aire], 1-20. IX.(1946), Mus. Par. / Muséum Paris / Paratypus / Fulvius femelle phaiocerus sp. n., G. Schmitz det. 1970 (FC n° 5454) ( MNHN EH 18228).

Nigeria. Cross-River State, Ikom-Obudu [localisation imprécise: les deux localités étant les chefs-lieux de districts différents!]: 1 ♀: Nigeria, SE., St. Ikom-Obudu, 25.V.1973, Linnavuori / Coll. Mus. Tervuren / Fulvius phaiocerus Sigwalt & Schmitz , det. J. Gorczyca (FC n°5445) ( MRAC). — Enugu State, Nsukka (environ 06°51’N, 07°23’E): 1 ♂: Nigeria, E.C. St., Nsukka, 30.VI.1973, Linnavuori / Coll. Mus. Tervuren / Fulvius phaiocerus Sigwalt & Schmitz , det. J. Gorczyca (FC n°5446) ( MRAC). — Nigeria, Osun State, Ile-Ife (environ 07°28’N, 04°33’E): 1 ♀: Ile-Ife, 02.VIII.1969, J. T. Melder / Paratypus / Fulvius phaiocerus sp. n. femelle G. Schmitz det. 1973 (FC n° 5446b) ( MRAC).

République Démocratique du Congo. Équateur, Eala (environ 00°40’N, 18°17’E): 1 ♀: Holotypus / Musée du Congo, Eala, viii.1935, J. Ghesquière, 708 / Fulvius femelle sp. n. phaiocerus G. Schmitz det. 1970 (FC n°5446a) (spécimen disséqué par G. Schmitz, endommagé) ( MRAC).

Notes: Chaque paratype est également pourvu de deux étiquettes non mentionnées ci-dessus, portant les mentions suivantes: « Paratype » et « Paratype Fulvius carayoni Pluot-Sigwalt & Chérot ». Le spécimen FC n° 5447 de sexe inconnu est apparemment une femelle disséquée, dont les genitalia ne sont pas fixés au spécimen.

AUTRES SPÉCIMENS EXAMINÉS. — Cameroun. Région de l’Ouest, Bayangam (environ 05°18’N, 10°27’E), 1 ♂, Cameroun, Mont-Kala, iv.1982, J. Carayon rec. / élevage 11.IV. [19]83 / Coll. Mus. Tervuren / Fulvius

phaiocerus Sigwalt & Schmitz, det.J. Gorczyca (FC n°5453) ( MRAC). Les genitalia de ce mâle sans pygophore ne sont pas fixés au spécimen; ce dernier porte en revanche une préparation entre lame et lamelle de plexiglas comprenant un rostre, une antenne, une patte et une aile, provenant manifestement d’un autre spécimen.

Ghana. Région Orientale, Tafo (environ‰ 6°12’N, 00°22’O), 1 ♂, Tafo, Ghana, 04.X.[19]65 / Coll. Mus. Tervuren / Fulvius phaiocerus Sigwalt & Schmitz , det. J. Gorczyca (FC n° 5436) ( MRAC). Ce spécimen est quasi détruit ; restent les genitalia préparés par G. Schmitz, deux pattes et une antenne.

Belgique. Province d’Anvers (environ 51°14’N, 04°23’E): 1 ♂: Antwerpen, port, dock de stockage des bois tropicaux provenant d’Afrique, 26.VI.2011, J. Bruers leg. ( ISNB). L’origine de ce spécimen reste inconnue.

DISTRIBUTION. — Afrique de l’Ouest: Cameroun (Yaoundé, Bayangam), Côte d’Ivoire (Adiopodoumé), Ghana (Enchi,Tafo,Tain), Guinée (Mont Nimba), Nigeria (Ile-Ife) et Afrique Centrale: République Démocratique du Congo (Eala). Importé accidentellement en Belgique (Anvers).

BIOTOPE. — Espèce récoltée sous écorce d’arbres abattus, tant au Cameroun par J. Carayon (spécimens à l’origine de la lignée d’élevage) qu’au Ghana par un collecteur inconnu.

ÉTYMOLOGIE. — Espèce dédiée au regretté Prof. Jacques Carayon (1916-1997), en reconnaissance de son importante contribution dans ce travail et en témoignage d’admiration pour l’ensemble de ses travaux.

DESCRIPTION

Mâle

Habitus en vue dorsale ( Fig. 1 ) très caractéristique. Tête allongée, quasi horizontale ( Fig. 1 ). Clypeus étroit, bombé, nettement séparé du front, rougebrun, rouge-vin, brun ou noir, avec une fine bande jaune ou orangée à la limite du tylus, sa surface faiblement striée portant de courtes soies blanches semi-dressées.Joues quasi triangulaires, rouge orangé sur la plus grande partie de leur surface. Brides allongées, rouge orangé taché de rose. Gula et buccules de même couleur que les brides. Front noir. Vertex noir, avec une bande brune à la limite du bord postérieur et deux taches brunes subcirculaires le long de la partie postérieure de la marge interne des yeux. Front et vertex tendant à être plus ou moins uniformément bruns ou noirs chez certains spécimens du Ghana (peut-être immatures). Pilosité du front et du vertex ( Fig. 2B ) similaire à celle du clypeus, constituée de courtes soies blanches semi-dressées. Vertex non marginé, finement sillonné au milieu. Yeux argentés, bordés par une zone rouge rosé, finement pileux, à ommatidies noires, occupant la majeure partie de la hauteur de la tête en vue latérale. Rostre puissant, de quatre articles, jaune avec une bande noire médiane sur sa face dorsale et quelques taches brunes ou rosées, atteignant au moins le 7 e segment abdominal du mâle; premier article plus long que la tête en vue latérale. Une paire de trichobothries sur la face ventrale de la tête ( Fig. 2J, K ), de part et d’autre du premier article du rostre, entre la buccula et le tubercule antennifère ( Fig. 3C ). Antenne: premier article épais, à peu près aussi large que l’apex du second article, brun-noir à noir, sa base jaune finement tachée de rouge ou de rosé; deuxième article subcylindrique, faiblement épaissi en massue de la base vers l’apex, brun rougeâtre sauf l’apex brun-noir et un très fin anneau flavescent à la base; troisième et quatrième articles nettement plus fins que le second ( Fig. 1 ), brun-noir, leur tégument nettement plus mince présentant à fort grossissement des anneaux filiformes rappelant les ténidies des trachées ( Fig. 3B ). Base des antennes située environ à moitié de la hauteur des yeux. Pilosité antennaire: courtes soies brunes légèrement dressées sur tous les articles ( Fig. 3A ); plus deux fortes soies dressées à l’extrémité tronquée et découpée en dents de scie sur le premier article ( Fig. 2E, F ), et de longues soies fines dressées sur les deux derniers articles ( Fig. 3B ). Pronotum uniformément noir ou noir sur ses bords et brun au milieu du disque, voire uniformément jaune brunâtre chez certains spécimens du Ghana; anneau apical rouge-brun foncé et étroit dorsalement, noir et nettement élargi, spatuliforme, latéralement ( Fig. 1 ). Pronotum en vue dorsale globalement en forme de trapèze, bord postérieur à peine incurvé, angles huméraux arrondis, bords latéraux quasi droits, bord antérieur concave. Pilosité du disque double: soies fines, blanches, semi-dressées, similaires à celles de la tête ( Fig. 2A ) et soies noires, épaisses, plus courtes, particulièrement visibles sur les bords latéraux du pronotum. Callosités brunes ou noires, plus ou moins marquées, circulaires, séparées par un sillon. Propleures bruns.Méso- et métapleures jaunes tachés de rosé et brun-gris. Mésoscutum largement décou- vert, brun, avec de grandes fossettes latérales noires et de courtes soies blanches, couchées. Scutellum noir, sa pilosité similaire à celle du mésoscutum. Pattes de couleur contrastée. Hanches et fémurs brun-noir à rouge-brun; trochanters jaunes tachés de rosé. Profémurs particulièrement épais, avec à l’apex quelques fortes soies tronquées sur la face inférieure.Méso- et métafémurs proportionnellement plus allongés, les métafémurs légèrement aplatis et rainurés médio-dorsalement, la rainure noire; six trichobrothries sur la face inférieure de chaque mésofémur, huit sur celle des métafémurs dont la distribution est identique à celle du jeune de stade I ( Fig. 7D, E ). Tibias jaune orangé.Tarses jaunes, de deux articles ( Fig. 2G ); griffe rectiligne ( Fig. 2H ) avec une petite dent subapicale. Hémélytre rougebrun à brun-noir, portant chacun quatre bandes calleuses blanc ivoire ( Fig. 1 ). Exocorie: rouge tachée de jaune ou avec une fine ligne jaune dans sa partie externe, brun-noir dans sa partie interne et apicale; séparée de l’endocorie sur ses deux tiers antérieurs par une bande calleuse blanc ivoire allant en s’élargissant vers l’arrière; séparée apicalement du cunéus par une tache semi-circulaire blanche finement bordée de rosé, dont l’extrémité postérieure couvre la base de ce cunéus. Rebord des hémélytres en vue latéro-ventrale orange à rosée, portant de courtes soies épineuses brunes sur sa marge dorsale. Endocorie brune, subdivisée en deux zones quasi égales par une bande calleuse blanc ivoire légèrement incurvée vers l’intérieur. Clavus brun, les sutures clavo-coriale et coriales largement rebordées par une bande calleuse blanc ivoire; le clavus subdivisé en deux zones inégales par une deuxième bande calleuse blanc ivoire légèrement incurvée vers l’extérieur et atteignant pratiquement son apex. Cunéus noir, la base étroitement tachée de blanc. Membrane brune, la petite cellule absente, la grande cellule anguleuse, son extrémité contiguë au cunéus rebordée de brun, les nervures de même couleur que la membrane. Face dorsale des hémélytres couverte de petites soies ( Fig. 2C, I ) similaires à celles du pronotum. Abdomen rouge-brun taché de noir, le pygophore brun. Genitalia. Paramère gauche ( Fig. 4B ) à base et corps larges, le bras allongé, non nettement séparé de l’apophyse primaire pointue. Paramère droit ( Fig. 4C ) large, son apophyse primaire en pointe allongée. Phallus ( Fig. 4A ) long, grêle et dilaté apicalement en ampoule, pourvu de deux spicules en crochet et d’une structure pseudo-pileuse apicale, probablement filamenteuse. Thèque peu sclérifiée.

Femelle

Similaire au mâle, mais généralement plus grande. Genitalia. Chambre génitale assez réduite, symétrique, dépourvue de région sclérifiée; sac séminal membraneux peu profond; paroi dorsale du vagin épaisse, formant au centre une poche subsphérique bien individualisée à paroi plissée, le sac dorsal ( Fig. 5A ). Anneaux pariéto-vaginaux petits, allongés, presque indistincts, non pigmentés, non sclérifiés. Oviductes latéraux larges à leur base, relativement courts, fortement plissés longitudinalement et torsadés. Paroi postérieure ( Fig.5D ) presque entièrement membraneuse. Vestibulum apparemment absent. Squama (ou plaque sous-génitale) triangulaire, fine et étroite ( Fig. 5C ).

Mensurations (mm)

Mâles. Longueur totale (de l’extrémité de la tête à celle de la membrane): 2,33-2,89 (n = 24); largeur totale: 0,83-1,03 (n = 21); largeur de l’oeil: 0,10- 0,17 (n = 29); largeur du vertex: 0,21-0,27 (n = 29); longueur des 4 articles antennaires: 0,20-0,22 (n = 27), 0,54-0,71 (n = 26), 0,25-0,32 (n = 23), 0,37- 0,47 (n = 18); longueur médiane du pronotum: 0,29-0,39 (n = 29); largeur du pronotum: 0,66-0,88 (n = 29); longueur du scutellum: 0,22-0,29 (n = 28); largeur du scutellum: 0,20-0,44 (n = 29); longueur du cunéus: 0,22-0,32 (n = 27); largeur du cunéus: 0,17-0,27 (n = 27).

Femelles. Longueur totale (de l’extrémité de la tête à celle de la membrane): 2,53-2,96 (n = 9); largeur totale: 0,99-1,30 (n = 9); largeur de l’oeil: 0,10- 0,19 (n = 14); largeur du vertex: 0,22-0,29 (n = 14); longueur des 4 articles antennaires: 0,20-0,26 (n = 12), 0,58-0,71 (n = 10), 0,27-0,32 (n = 6), 0,39-0,49 (n = 6); longueur médiane du pronotum: 0,32-0,44 (n = 14); largeur du pronotum: 0,71-0,96 (n = 14); longueur du scutellum: 0,25-0,34 (n = 12); largeur du scutellum: 0,25-0,44 (n = 12); longueur du cunéus: 0,22-0,34 (n = 13); largeur du cunéus: 0,17-0,34 (n = 13).

OEuf ( Fig. 6 )

De couleur ambrée, très légèrement courbé et aplati, portant deux côtes longitudinales ( Fig. 6A , C-D), il mesure un peu plus de 0,8 mm de long sur 0,2-0,3 mm de diamètre au maximum. Surface du chorion lisse; pôle antérieur pourvu de deux micropyles, d’une collerette périphérique d’aéropyles et latéralement de deux longs processus aéropylaires. Opercule ovale ( Fig. 6B ), quasi lisse, montrant seulement une microsculpture polygonale.

Immatures

Stade 1 ( Figs 7A ; 8A ). Corps mince, allongé (environ 0,9 mm de long). Coloration générale beige-rosé. Yeux rouges, composés de cinq ou six ommatidies et pourvus de deux petites soies. Antennes de quatre articles, les deux derniers particulièrement épais. Rostre de quatre articles, atteignant le 4 e sternite abdominal. Pattes claires. Tégument mince, non sclérifié, non pigmenté, portant deux grands types de soies: des soies effilées relativement courtes et semi-dressées, principalement sur les antennes, les pattes, la face ventrale de l’abdomen, et des soies plus épaisses dressée, à l’extrémité tronquée, principalement sur la face dorsale du corps. Une paire de trichobothries céphaliques ventrales, de part et d’autre du premier article du rostre ( Fig. 7B ); six paires de trichobothries sur les mésofémurs et huit sur les métafémurs ( Figs 7D, E ); quelques très longues soies dressées sur le dernier article antennaire. Glande dorso-abdominale entre les tergites 3 et 4; orifice glandulaire ovale.

Stade 2 ( Fig. 8B ). Très semblable au jeune de stade 1. S’en distingue par une taille un peu supérieure (environ 1,3 mm de long), par le nombre d’ommatidies (9 à 10) et de soies oculaires (3 à 4) ainsi que par la forme des deux derniers articles antennaires qui commencent à s’allonger et à s’amincir.

Stade 3 ( Fig. 8C ). À peine plus grand que le stade 2 (environ 1,5 mm de long), il se distingue de ce dernier par une coloration générale plus foncée (brun-rouge), le nombre d’ommatidies (une quinzaine) et de soies oculaires (5 à 6), ainsi que par la présence d’une première ébauche de fourreaux alaires sous la forme d’un léger bourrelet méso- et métathoracique. Orifice glandulaire ovale ( Fig. 8C , détail).

Stade 4 ( Fig. 8D ). Corps large et plus long (environ 1,9 mm de long). Yeux composés de 25 à 30 ommatidies avec une quinzaine ou plus de soies oculaires. Fourreaux alaires bien distincts.

Stade 5 ( Fig. 8E ). Assez similaire au stade 4. Corps large (environ 2,1 mm de long). Yeux formés de plus de 30 ommatidies et portant plus de 15 soies oculaires. Orifice de la glande dorso-abdominale tendant à se diviser en deux, une languette tégumentaire issue de son bord antérieur atteint presque son bord postérieur ( Fig. 8E , détail). Chétotaxie identique à celle décrite pour le stade 1.

Figures

FIG. 1. — Fulvius carayoni n. sp., habitus en vue dorsale (mâle MNHN EH 18219). Échelle: 1 mm.

FIG. 2. — Fulvius carayoni n. sp. A-I, paratype femelle FC n°5472 (détails morphologiques vus au MEB); A, pilosité et ornementation du tégument, pronotum; B, idem, vertex; C, idem, corie; D, articles antennaires I et II, vue dorsale; E, article antennaire I, détail des soies: deux fortes soies dressées à l’extrémité tronquées et soies semi-dressées effilées; F, détail de l’apex en dent de scie d’une forte soie dressée; G, tarse postérieur bisegmenté; H, prétarse et griffe postérieure; I, soie semi-dressée sur la corie; J, trichobothrie céphalique ventrale; K, idem, détail de l’embase. Échelles: A-C, E, H, J, K, 10 µm; D, 100 µm; F, 2 µm; G, 50 µm; I, 5 µm.

FIG. 3. — Fulvius carayoni n. sp.: A, pilosité sur le 2e article antennaire; B, idem, sur le dernier article très aminci; C, face ventrale de la tête montrant la situation de la paire de trichobothries. Échelles: 0,1 mm.

FIG. 4. — Fulvius carayoni n. sp., genitalia mâles: A, phallus en érection (dessin J.Carayon); B, paramère gauche en vue ventrale (paratype FC n° 5438); C, paramère droit en vue latéro-ventrale (paratype FC n°5436). Abréviations: spi, spicule; spp, structure pseudo-pileuse. Échelles: 0,1 mm.

FIG. 5. — Fulvius carayoni n. sp., genitalia femelles: A, voies génitales ectodermiques en vue dorsale; B, détail de l’anneau pariétovaginal gauche; C, squama (plaque sous-génitale); D, paroi postérieure. Abréviations: gv, glande vermiforme; ov, oviducte; sc, anneau pariéto-vaginal; sd, sac dorsal; ss, sac séminal. Échelles: 0,2 mm.

FIG. 6. — Fulvius carayoni n. sp., oeuf ovarien: A, vue générale de profil; B, opercule, vue de dessus; C, pôle antérieur montrant le détail d’un aéropyle; D, pôle antérieur montrant la collerette périphérique,un micropyle et les deux longs processus aéropylaires. Abréviations: m, micropyle; pa, processus aéropylaire.Échelles: A, 0,5 mm; B-D, 0,1 mm.

FIG. 7. — Fulvius carayoni n. sp., jeune de premier stade: A, vue dorsale montrant la chétotaxie primaire,et la distribution respectives des fortes soies tronquées et des soies effilées; B, tête en vue ventrale, montrant l’emplacement de la paire de trichobothries céphaliques; C, extrémité de l’abdomen en vue ventrale montrant l’emplacement respectif des fortes soies tronquées et des soies effilées; D, E, méso- (D),et métafémur (E) en vue ventrale montrant l’emplacement et la distribution des trichobothries.Échelle: 0,1 mm.

FIG. 8. — Fulvius carayoni n. sp., immatures (pattes non représentées) et détail de l’orifice de la glande dorso-abdominale: A, stade I; B, stade II; C, stade III; D, stade IV; E, stade V. Échelles: 0,5 mm.

FIG. 9. — Fulvius carayoni n. sp. (imago): A, appareil génital interne du mâle (reconstitué d’après plusieurs préparations in toto faites par J. Carayon); B, tube digestif; C, glande salivaire. Abréviations: cd, canal déférent; m1, 2, 3, mesenteron 1, 2, 3 (intestin moyen); md, mésadénie dorsale; mv, mésadénie ventrale; o, oesophage; r, rectum; t, testicule; vs, vésicule séminale; tM, tubes de Malpighi. Échelles: 0,1 mm.

FIG. 10.— Fulvius carayoni n.sp.,mâle et femelle fixés in copula et conservés en alcool: A, vue d’ensemble; B, détail du pygophore et de l’ovipositeur; C, idem à plus fort grossissement montrant que l’extrémité de l’ovipositeur est enfoncée à l’intérieur du pygophore, dans la chambre génitale du mâle. Abréviations: ovi, ovipositeur; par, paramère droit; pyg, pygophore. Échelles: A, 1 mm; B, 0,5 mm; C, 0,1 mm.

FIG. 11.— Fulvius carayoni n.sp.,coupe transversale de l’ovipositeur d’une femelle fixée in copula montrant le phallus inséré le long de l’ovipositeur entre les gonapophyses VIII et IX (dessin J. Carayon). Abréviations: gp VIII, IX, gonapophyses VIII, IX; mi, membrane intergonocoxale; ph, phallus; sq, squama (plaque sous-génitale). Échelle: 50 µm.